Unieruchomiony CALB
CALB jest unieruchamiany poprzez adsorpcję fizyczną na wysoce hydrofobowej żywicy, która jest makroporowatym polimerem styrenowo-metakrylanowym. Unieruchomiony CALB nadaje się do zastosowań w rozpuszczalnikach organicznych i układach bezrozpuszczalnikowych, a w odpowiednich warunkach może być wielokrotnie poddawany recyklingowi i ponownie wykorzystywany.
Kod produktu: SZ-CALB-IMMO100A, SZ-CALB-IMMO100B.
★Wyższa aktywność, wyższa selektywność chiralna i wyższa stabilność.
★Lepsza wydajność w fazach niewodnych.
★Łatwe usuwanie z układu reakcyjnego, szybkie zakończenie reakcji i zapobieganie powstawaniu pozostałości białka w produkcie.
★Można poddać recyklingowi i ponownie wykorzystać, co pozwala obniżyć koszty.
| Działalność | ≥10000PLU/g |
| Zakres pH dla reakcji | 5-9 |
| Zakres temperatur reakcji | 10-60℃ |
| Wygląd | CALB-IMMO100-A: Ciało stałe o barwie jasnożółtej do brązowej CALB-IMMO100-B: Biały do jasnobrązowego stały |
| Wielkość cząstek | 300-500μm |
| Strata podczas suszenia w temperaturze 105℃ | 0,5%-3,0% |
| Żywica do immobilizacji | Makroporowaty polimer styrenowo-metakrylanowy |
| Rozpuszczalnik reakcji | Woda, rozpuszczalnik organiczny itp. lub bez rozpuszczalnika. Do reakcji w niektórych rozpuszczalnikach organicznych można dodać 3% wody, aby poprawić efekt reakcji. |
| Wielkość cząstek | CALB-IMMO100-A: 200-800 μm CALB-IMMO100-B: 400-1200 μm |
Definicja jednostki: 1 jednostka odpowiada syntezie 1 μmol laurynianu propylu na minutę z kwasu laurynowego i 1-propanolu w temperaturze 60°C. Powyższe CALB-IMMP100-A i CALB-IMMO100-B odpowiadają unieruchomionym nośnikom o różnej wielkości cząstek.
1. Typ reaktora
Unieruchomiony enzym można stosować zarówno w reaktorach okresowych z kotłem, jak i w reaktorach przepływowych z nieruchomym złożem. Należy unikać zgniatania pod wpływem siły zewnętrznej podczas podawania lub napełniania.
2. pH reakcji, temperatura i rozpuszczalnik
Unieruchomiony enzym należy dodać na końcu, po dodaniu i rozpuszczeniu pozostałych materiałów, a następnie dostosować pH.
Jeżeli zużycie substratu lub powstanie produktu spowoduje zmianę pH podczas reakcji, do układu reakcyjnego należy dodać odpowiednią ilość buforu lub monitorować i regulować pH w trakcie reakcji.
W zakresie tolerancji temperaturowej CALB (poniżej 60°C) współczynnik konwersji wzrastał wraz ze wzrostem temperatury. W praktyce temperaturę reakcji należy dobrać w zależności od stabilności substratu lub produktu.
Zasadniczo reakcja hydrolizy estru jest odpowiednia w układzie fazy wodnej, natomiast reakcja syntezy estru jest odpowiednia w układzie fazy organicznej. Rozpuszczalnikiem organicznym może być etanol, tetrahydrofuran, n-heksan, n-heptan i toluen lub odpowiednia mieszanina rozpuszczalników. W przypadku reakcji w niektórych rozpuszczalnikach organicznych, w celu poprawy efektu reakcji można dodać 3% wody.
3. Ponowne użycie i okres eksploatacji CALB
W odpowiednich warunkach reakcji CALB można odzyskać i ponownie wykorzystać, ale konkretny czas zastosowania może się różnić w zależności od projektu.
Jeśli odzyskany CALB nie będzie ponownie wykorzystywany w sposób ciągły i po odzyskaniu będzie musiał zostać przechowany, należy go umyć, wysuszyć i uszczelnić w temperaturze 2–8 ℃.
Po kilku rundach ponownego użycia, jeśli wydajność reakcji nieznacznie spadnie, można dodać odpowiednią ilość CALB i kontynuować jego stosowanie. Jeśli wydajność reakcji znacznie spadnie, należy go wymienić.
Przykład 1 (aminoliza)(1):
Przykład 2 (aminoliza)(2):
Przykład 3 (synteza poliestru z otwarciem pierścienia)(3):
Przykład 4 (transestryfikacja, regioselektywna wobec grupy hydroksylowej)(4):
Przykład 5 (transestryfikacja, kinetyczny rozdział alkoholi racemicznych)(5):
Przykład 6 (Estryfikacja, kinetyczny rozdział kwasu karboksylowego)(6):
Przykład 7 (Esteroliza, rozdział kinetyczny)(7):
Przykład 8 (Hydroliza amidów)(8):
Przykład 9 (Acylowanie amin)(9):
Przykład 10 (reakcja addycji Aza-Michaela)(10):
1. Chen S, Liu F, Zhang K i in. Tetrahedron Lett, 2016, 57: 5312-5314.
2. Olah M, Boros Z, anszky GH i tal. Tetrahedron, 2016, 72: 7249-7255.
3. Nakaoki1 T, Mei Y, Miller LM, i in. Ind. Biotechnol, 2005, 1(2):126-134.
4. Pawar SV, Yadav G DJ Ind. inż. Chem, 2015, 31: 335-342.
5. Kamble MP, Shinde SD, Yadav G DJ Mol. Catal. B: Enzym, 2016, 132: 61-66.
6. Shinde SD, Yadav G D. Process Biochem, 2015, 50: 230-236.
7. Souza TC, Fonseca TS, Costa JA i in. J. Mol. Katal. B: Enzym, 2016, 130: 58-69.
8. Gavil´an AT, Castillo E, L´opez-Mungu´AJ Mol. Catal. B: Enzym, 2006, 41: 136-140.
9. Joubioux FL, Henda YB, Bridiau N i in. J. Mol. Katal. B: Enzym, 2013, 85-86: 193-199.
10. Dhake KP, Tambade PJ, Singhal RS i in. Tetrahedron Lett, 2010, 51: 4455-4458.
